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Article de méthode

Résection d’une tumeur cérébrale chez une souris à l’aide d’un système de résection mini-invasif

1.4K vues

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7 août 2025

Dans cet article

Résumé

Source : Alomari, S., et al. Mise en œuvre de la résection mini-invasive des tumeurs cérébrales chez les rongeurs pour une collecte de tissus à haute viabilité. J. Vis. Exp. (2022)

Cette vidéo démontre l’utilisation d’un système de résection mini-invasif (MIRS) pour exciser le tissu tumoral d’une souris anesthésiée implantée avec une tumeur. La procédure consiste à fixer la souris sur un cadre stéréotaxique, à rouvrir le site chirurgical précédent pour accéder au cerveau et à insérer une canule spécialisée qui utilise l’aspiration et une lame rotative pour retirer les sections tumorales. Après la résection, le tissu excisé est recueilli à l’aide d’un tube stérile et la plaie est fermée pour permettre la guérison.

Protocole

Toutes les procédures impliquant des modèles animaux ont été examinées par le comité institutionnel local de protection des animaux et le comité d’examen vétérinaire JoVE.

1. Implantation initiale de la tumeur intracrânienne

  1. Dans la phase initiale de l’étude, injectez par voie intracrânienne à chaque souris 100 000 cellules (lignée cellulaire de gliome murin GL261) en suspension dans 4 μL de solution saline tamponnée au phosphate (1x PBS) à une profondeur de 2,5 mm conformément au rapport précédemment publié.
  2. Quantifiez le signal tumoral chez chaque souris à l’aide du système d’imagerie in vivo 9 jours après l’implantation de la tumeur.

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Résultats

figure-results-1

Figure 1 : Configuration du système MIRS. (A) Système de résection mini-invasive (MIRS) pour tumeur cérébrale chez les modèles de rongeurs avec un tissu intégré système de préservation. (B) Panneau.......

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Anased (Xylazine injection, 100 mg/mL)Covetrus33198
Système d’anesthésiePatterson Scientific78935903
Conteneur de déchets de gaz anesthésiquePatterson Scientific78909457
C57Bl/6, souris âgées de 6 à 8 semainesCharles River LaboratoriesCode de souche 027
IsofluraneCovetrus11695-6777-2
Vaporisateur d’isofluranePatterson Scientific78916954
KétamineCovetrus11695-0703-1
Kopf Cadre stéréotaxiqueKopf Instruments5001
Microscope à champ lumineuxBioTekCytation 5
Unité de micro-injectionKopf5001
Perceuse à micromoteurForedomF210418
système d’IRMBruker7T Biospec Avance III Scanner
d’IRM NICO Myriad SystemNICO Corporation
Pommade ophtalmiquePuralube vetting
PapainSigma Aldrich#P4762
PBSInvitrogen#14190250
PenStrepMillipore SigmaN1638
Percoll solutionSigma Aldrich#P4937
Contrôleurde pipetteFalconA07260
Solution de povidone iodéeAplicare52380-1905-08
RPMI MediaInvitrogenINV-72400120
Lame de scalpelCovetrus7319
Manche de scalpelFine Science Tools91003-12
Marqueur cutanéTime OutD538,851
Décapant d’agrafesMikRonACR9MM
AgrafeuseMikRonACA9MM
AgrafesClay Adams427631
Cadre stéréotaxiqueKopf Instruments5000
SucroseSigma AldrichS9378
Suture, vicryl 4-0EthiconJ494H

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